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營養物質：包含氨基酸、維生素、葡萄糖等細胞生長所必需的基礎營養成分 。氨基酸是細胞合成蛋白質的原料；維生素參與細胞內眾多的代謝反應；葡萄糖則為細胞提供能量，這些物質共同滿足細胞生長、分裂和代謝的需求。
生長因子：如表皮生長因子（EGF）、成纖維細胞生長因子（FGF）等 。這些生長因子能夠與細胞表面的特異性受體結合，激活細胞內的信號傳導通路，促進細胞的增殖、分化和存活。例如，EGF 可刺激上皮細胞的生長和分化，在皮膚細胞培養等實驗中發揮重要作用。
結合蛋白：像轉鐵蛋白可結合并轉運鐵離子，為細胞提供鐵元素，同時防止鐵離子在溶液中產生自由基對細胞造成損傷；白蛋白能夠結合和運輸脂肪酸、激素等物質，維持細胞外環境的穩定 。
緩沖物質與 pH 調節劑：血清中的碳酸氫鹽、蛋白質等成分構成緩沖體系，可維持細胞培養液的 pH 穩定在 7.2 - 7.4 的適宜范圍，為細胞創造穩定的酸堿環境 。
高品質來源：血清取自澳大利亞特定區域的健康胎牛，該地區具有嚴格的動物健康監管體系，有效避免了瘋牛病（BSE）、口蹄疫等重大傳染病源的污染，從源頭上保證了血清的安全性和高品質 。
嚴格的質量控制：
微生物檢測：每一批次血清均經過嚴格的細菌、真菌、支原體和病毒檢測 。采用靈敏度高的檢測方法，如培養法、PCR 法等，確保血清無微生物污染，避免微生物對細胞培養造成干擾，甚至導致細胞死亡。
內毒素檢測：通過鱟試劑法（LAL 法）精確測定血清中的內毒素含量，每批血清內毒素水平低于 0.06 EU/mL，遠低于行業標準，減少內毒素對細胞生長和實驗結果的不良影響 。
細胞培養性能測試：使用多種不同類型的細胞系（如 HeLa 細胞、CHO 細胞等）對血清進行培養性能測試，評估細胞的生長速率、形態、存活率等指標，確保血清能夠為細胞提供良好的生長支持 。
穩定的批次間一致性：Thermo Fisher Scientific 采用標準化的生產流程和優良的質量控制體系，從血清采集、加工處理到最終檢測，每一個環節都嚴格把控 。通過對關鍵指標的嚴格監測和調控，保證不同批次的血清在成分和性能上具有高度一致性，科研人員在進行長期實驗或重復性實驗時，無需擔心因血清批次差異導致實驗結果不穩定的問題。
廣泛的適用性：適用于多種細胞類型的培養，無論是常規的細胞系，還是培養難度較高的原代細胞、胚胎干細胞等，都能提供良好的營養支持 。并且可與多種基礎培養基（如 DMEM、RPMI 1640 等）配合使用，滿足不同科研實驗的需求。
便捷的使用方式：產品以 500 mL 瓶裝形式提供，包裝規格符合實驗室常規使用需求。血清經過 γ 射線輻照處理，在不影響血清成分和性能的前提下，有效殺滅潛在的微生物，用戶無需進行額外的滅菌處理，可直接按照實驗需求進行稀釋和使用，操作便捷高效 。
血清檢查：收到血清后，立即檢查包裝是否完好，標簽信息是否清晰準確，包括產品名稱、貨號、規格、批號、有效期、儲存條件等 。將血清短暫離心（低速，如 1000 - 2000 rpm，離心 3 - 5 分鐘），使附著在瓶蓋上的血清集中于瓶底，避免損失。同時，觀察血清外觀，正常情況下應為淺黃色或琥珀色、澄清且無沉淀或渾濁現象。若發現血清顏色異常、有明顯沉淀或異味，請勿使用，并及時聯系供應商處理。
培養基配制：根據所培養細胞的類型和實驗需求，選擇合適的基礎培養基 。在無菌環境下（如超凈工作臺），按照培養基說明書的要求，將基礎培養基粉末溶解于適量的超純水中，充分攪拌至溶解。然后，根據實驗設計，添加相應的添加劑（如谷氨酰胺、丙酮酸鈉等）。最后，按照一定比例（通常為 5% - 20%，具體比例需根據細胞類型和實驗要求確定）加入胎牛血清，用無菌的移液管或注射器將血清緩慢加入培養基中，輕輕搖勻，使血清與培養基充分混合 。配制好的培養基應盡快使用，如需保存，可置于 2 - 8℃冰箱中，但保存時間不宜過長，以免影響培養基的營養成分和性能。
細胞培養耗材準備：準備好無菌的細胞培養瓶、培養皿、移液管、槍頭、離心管等耗材 。確保所有耗材均經過嚴格的滅菌處理，可通過高壓蒸汽滅菌或購買預滅菌的一次性耗材。在使用前，檢查耗材的包裝是否完好，避免污染。
細胞復蘇（若為凍存細胞）：從液氮罐中取出凍存的細胞，迅速放入 37℃水浴鍋中，輕輕搖晃，使細胞在 1 - 2 分鐘內快速解凍 。將解凍后的細胞懸液轉移至無菌離心管中，加入適量的含血清培養基，輕輕吹打混勻，然后以低速離心（如 800 - 1000 rpm，離心 3 - 5 分鐘），棄去上清液，去除凍存保護劑。向離心管中加入適量的新鮮配制的含血清培養基，輕輕吹打，使細胞均勻分散，制成細胞懸液。將細胞懸液接種到細胞培養瓶或培養皿中，補充適量的培養基，使細胞密度達到合適范圍（根據細胞類型而定），然后將細胞培養瓶或培養皿放入細胞培養箱中，在適宜的溫度（一般為 37℃）、濕度（95%）和氣體環境（5% CO?）下培養 。
細胞傳代：當細胞生長達到 80% - 90% 匯合度時，需要進行傳代培養 。首先，棄去細胞培養瓶中的舊培養基，用無菌的 PBS 緩沖液輕輕沖洗細胞 1 - 2 次，去除殘留的培養基和代謝產物。然后，加入適量的胰蛋白酶 - EDTA 消化液（根據培養瓶大小而定），輕輕搖晃培養瓶，使消化液均勻覆蓋細胞表面，在 37℃培養箱中孵育 1 - 3 分鐘，觀察細胞形態變化，當細胞變圓、部分細胞開始脫落時，立即加入含血清培養基終止消化（血清中的蛋白可中和胰蛋白酶活性） 。用無菌的移液管輕輕吹打細胞，使細胞脫離培養瓶壁，形成細胞懸液。將細胞懸液轉移至無菌離心管中，以低速離心（如 800 - 1000 rpm，離心 3 - 5 分鐘），棄去上清液。根據實驗需求，將細胞重新接種到新的培養瓶或培養皿中，補充適量的含血清培養基，放入細胞培養箱中繼續培養 。
細胞凍存：當細胞生長狀態良好且數量足夠時，可進行細胞凍存，以備后續實驗使用 。首先，將細胞按照上述傳代步驟消化并制成細胞懸液，然后以低速離心（如 800 - 1000 rpm，離心 3 - 5 分鐘），棄去上清液。向細胞沉淀中加入適量的細胞凍存液（通常為含 10% DMSO、90% 胎牛血清的培養基），輕輕吹打，使細胞均勻分散于凍存液中 。將細胞懸液分裝到無菌的凍存管中，每管體積一般為 1 - 2 mL，并做好標記（注明細胞名稱、凍存日期、批號等信息） 。將凍存管放入程序降溫盒中，置于 - 80℃冰箱中過夜，然后轉移至液氮罐中長期保存 。
血清保存：未開封的血清應儲存于 - 20℃冰箱中，可保存 5 年 。避免反復凍融，因為凍融過程會破壞血清中的蛋白結構，影響血清性能。若血清需多次使用，可在開封后將其分裝成小份（根據每次使用量確定分裝體積），密封好后放入 - 20℃冰箱冷凍保存，每次使用時取出一份，避免整瓶血清多次凍融 。已開封的血清，若短時間內使用（1 - 2 周），可儲存于 2 - 8℃冰箱；若長時間不用，仍需分裝后冷凍保存 。
廢棄物處理：實驗過程中產生的廢棄血清、培養基以及含有細胞的液體等，應按照實驗室生物安全和化學廢棄物處理規定進行分類處理 。對于含有生物活性物質的廢棄物，需進行高壓滅菌或化學消毒處理后，再進行丟棄，防止污染環境和傳播生物危害 。
血清儲存與解凍：
嚴格按照規定的溫度儲存血清，避免因儲存溫度不當導致血清變質。從 - 20℃冰箱中取出血清進行解凍時，應將血清置于 2 - 8℃冰箱中緩慢解凍，或采用水浴解凍的方式，但水浴溫度不得超過 37℃，且解凍過程中需不斷輕輕搖晃血清瓶，使血清均勻解凍 。避免將血清暴露在高溫環境下快速解凍，以免引起血清中蛋白沉淀和活性降低。
解凍后的血清應盡快使用，若不能立即使用，應儲存于 2 - 8℃冰箱中，并在一周內用完。若血清出現渾濁或沉淀，可通過低速離心（如 1000 - 2000 rpm，離心 5 - 10 分鐘）去除沉淀后使用，但需注意沉淀可能會影響血清的部分性能 。
細胞培養操作：
在細胞培養過程中，要嚴格遵守無菌操作規范，在超凈工作臺中進行所有操作，使用前需對超凈工作臺進行紫外消毒和風機預吹處理 。操作時應佩戴口罩、手套，避免交叉污染。每次使用完移液管、槍頭等耗材后，應及時丟棄，不得重復使用。
不同類型的細胞對血清的需求和耐受性不同，在進行新的細胞培養實驗前，建議進行預實驗，摸索最佳的血清添加比例和培養條件 。同時，注意觀察細胞的生長狀態，如細胞形態、增殖速度、存活率等，根據細胞狀態及時調整培養條件。
在更換培養基時，盡量減少細胞暴露在空氣中的時間，避免培養基干涸和細胞脫水。更換培養基的頻率應根據細胞的生長速度和代謝情況而定，一般為 1 - 2 天更換一次，以保證細胞能夠獲得充足的營養物質和良好的生長環境 。
安全防護：血清中可能含有未知的生物活性物質，雖然經過嚴格檢測，但在操作過程中仍需注意個人防護 。避免血清接觸皮膚和眼睛，如不慎接觸，應立即用大量清水沖洗，并根據情況就醫。實驗結束后，及時清洗實驗器材和操作臺，保持實驗室環境整潔安全 。
細胞生長緩慢或不生長：
原因：可能是血清添加比例不合適、血清質量不佳、培養基營養成分不足、細胞污染或培養條件不適宜等 。
解決方法：嘗試調整血清添加比例，增加或減少血清用量，觀察細胞生長情況；檢查血清的批號和質量檢測報告，確認血清是否合格，必要時更換新批次的血清；檢查培養基的配制是否正確，是否添加了足夠的營養物質；對細胞進行微生物污染檢測，如支原體檢測等，若發現污染，及時采取措施處理；優化培養條件，如調整溫度、CO?濃度、濕度等，確保細胞處于適宜的生長環境 。
細胞出現大量死亡：
原因：可能是血清中含有毒素或有害物質、細胞受到微生物污染、消化過度、培養環境突然改變等 。
解決方法：檢測血清中的內毒素含量和其他有害物質，若血清存在問題，更換新的血清；對細胞和培養環境進行微生物檢測，找出污染源并進行處理；優化細胞消化步驟，控制消化時間和消化液濃度，避免消化過度；在更換培養基、轉移細胞等操作時，盡量保持培養環境的穩定，減少對細胞的刺激 。
培養基出現渾濁：
原因：可能是培養基受到微生物污染、血清中存在雜質或沉淀、細胞代謝產物積累過多等 。
解決方法：對培養基進行微生物培養檢測，確定是否污染，若污染，丟棄污染的培養基，并對培養設備和環境進行消毒；將血清進行低速離心，去除沉淀后再使用；增加培養基更換頻率，及時清除細胞代謝產物，保持培養基的清潔 。
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